噬菌體抗體庫技術(shù)是目前應(yīng)用廣泛的基因工程抗體制備技術(shù)，在人源抗體的克隆、抗體性能的修飾、抗體基因的研究等方面具有重要的理論和實(shí)用價(jià)值。抗體庫展示技術(shù)的篩選能力為其應(yīng)用發(fā)展奠定了基礎(chǔ)。而能否從抗體庫中獲得預(yù)期的抗體受到很多因素的制約，包括抗體庫的存儲容量、多樣性、存儲條件、擴(kuò)增和篩選流程等，篩選策略需要根據(jù)抗原的性質(zhì)來確定。其他篩選策略的選擇依據(jù)如下文所述：
抗原性質(zhì)明確時(shí)，使用固相篩選法和液相篩選法。
固相篩選法通過將抗原包被在酶標(biāo)板或其他固相介質(zhì)上來富集表達(dá)高親和性抗體的噬菌體。該法有兩種篩選方式：ELISA微孔板篩選和免疫試管篩選。當(dāng)抗體庫容量較大，預(yù)期目標(biāo)抗體的拷貝數(shù)較多，親和力較強(qiáng)且抗原來源豐富時(shí)，固相抗原篩選法最常用。固相篩選法的缺點(diǎn)有：消耗大量抗原、部分抗原與固相介質(zhì)結(jié)合后會破壞表位、不易定量、對抗體親和力的選擇效果不佳。因此，在抗原有限等以上這些情況下可以選擇液相篩選法。
液相篩選法是在與親和素偶聯(lián)的磁珠或瓊脂糖上包被生物素化的抗原進(jìn)行抗體篩選。液相篩選法的篩選效率高，增加了噬菌體顆粒與抗原接觸的機(jī)率，能有效地將數(shù)量少或親和力低的抗體從文庫中分離出來。通過多次篩選，可以得到表達(dá)高親和力抗體的噬菌體。
抗原無法純化或性質(zhì)未知時(shí)，就需要開發(fā)新的篩選方法來建立噬菌體展示抗體庫。目前比較成熟的有細(xì)胞篩選方法、組織篩選或體內(nèi)篩選方法、選擇感染篩選方法、蛋白質(zhì)芯片篩選方法等。
細(xì)胞篩選方法可以保持抗原和抗體的天然構(gòu)象，多用于腫瘤細(xì)胞抗體篩選，還適用于細(xì)胞表面受體及抗原鑒定。而由于細(xì)胞膜成分復(fù)雜，會增加非特異性結(jié)合，因此需要去除非特異性結(jié)合的背景。最常用的去除背景的方法是用不表達(dá)特異性抗原的細(xì)胞（空白細(xì)胞）預(yù)吸附抗體庫，去除非目標(biāo)抗體（負(fù)選擇），然后用吸附的噬菌體結(jié)合目標(biāo)抗體。靶細(xì)胞獲得靶細(xì)胞結(jié)合抗體（正選擇），經(jīng)過幾輪“負(fù)選擇-正選擇-擴(kuò)增”，針對靶分子的抗體噬菌體被富集。但多次篩選容易丟失特異性結(jié)合的抗體噬菌體，喪失多樣性。因此該方法的應(yīng)用并不廣泛，在此方法基礎(chǔ)上開發(fā)了扣除篩選、競爭篩選、內(nèi)化篩選等方法。
組織篩選或體內(nèi)篩選方法多用于臨床研究。組織篩選方法是利用新鮮的組織切片進(jìn)行抗體篩選，但由于組織本身抗原數(shù)量有限，限制了噬菌體抗體的回收效率。體內(nèi)篩選方法是將待篩選抗體庫通過靜脈注射進(jìn)小鼠體內(nèi)，然后取出組織或靶器官，回收噬菌體，經(jīng)過3-4輪的富集可得到特異性抗體。與體外篩選相比，此類組織和細(xì)胞處于天然的三維微環(huán)境中，篩選結(jié)果更加真實(shí)。但體內(nèi)篩選效率低、篩選難度大、對文庫要求較高——通常要求文庫的多樣性達(dá)到108-109。同時(shí)，應(yīng)盡量減少空噬菌體的含量。
選擇感染篩選法是將PⅢ蛋白的氨基端結(jié)構(gòu)域（NT）用特定的多肽或蛋白替代，然后這些多肽或蛋白與帶有NT端的配基特異性結(jié)合時(shí)，才會有感染能力，因此在細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)繁殖富集，得到特異性抗體。
蛋白芯片篩選法利用高通量蛋白功能分析技術(shù)，將有大量不同種類的蛋白質(zhì)點(diǎn)樣在載體上，可同時(shí)檢測這些抗原抗體的反應(yīng)，通過掃描儀讀取熒光強(qiáng)度，可以利用計(jì)算機(jī)對待測樣品進(jìn)行分析計(jì)算。蛋白質(zhì)芯片不僅具有高通量的特點(diǎn)，還可以高靈敏性和低假陽性的篩選抗體。
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